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快速末端修復(fù)A尾添加模塊

2020/4/1 8:56:01

背景[1-6]

快速末端修復(fù)A尾添加模塊是針對(duì)Illumina®高通量測(cè)序平臺(tái)文庫(kù)構(gòu)建而專業(yè)設(shè)計(jì)的DNA末端修復(fù)/A尾添加模塊,具有高效、快速、易實(shí)現(xiàn)自動(dòng)化的優(yōu)勢(shì)。本產(chǎn)品兼容1 ng-1μg片段化Input DNA,可在單管內(nèi)實(shí)現(xiàn)片段化DNA的末端補(bǔ)平、5端磷酸化和3端加A尾反應(yīng),得到5末端含磷酸基團(tuán)且3末端帶有dA突出的DNA產(chǎn)物。該產(chǎn)物無(wú)需純化,即可使用Hieff NGSTM Fast-Pace DNA Ligation Module進(jìn)行文庫(kù)構(gòu)建接頭連接反應(yīng)。

快速末端修復(fù)A尾添加模塊與Hieff NGSTM Fast-Pace DNA Ligation Module,2×Hieff CanaceTM High-Fidelity PCR Master Mix共同用于DNA文庫(kù)構(gòu)建,通過(guò)Illumina®高通量平臺(tái)測(cè)序驗(yàn)證其有效性。本產(chǎn)品中提供的所有試劑組分均經(jīng)過(guò)嚴(yán)格質(zhì)檢,最高程度保障產(chǎn)品優(yōu)異性能與批間穩(wěn)定性。 快速末端修復(fù)A尾添加模塊兼容500 pg-1μg片段化Input DNA,可在單管內(nèi)實(shí)現(xiàn)片段化DNA的末端補(bǔ)平、5'端磷酸化和3'端加A尾反應(yīng),得到5'末端含磷酸基團(tuán)且3'末端帶有dA突出的DNA產(chǎn)物。

質(zhì)量控制:

Fast-Pace End Repair/dA-Tailing Enzyme

1.SDS-PAGE純度:>95%。

2.核酸內(nèi)切酶活性:50μL反應(yīng)體系中加入10μL本酶和1μgφX174 RF I DNA,37°C孵育4小時(shí)。經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),RF II轉(zhuǎn)化比率<10%。

3.磷酸酶活性:在磷酸酶活性檢測(cè)緩沖液中加入10μL本酶和2.5 mM對(duì)硝基苯磷酸,37°C孵育4小時(shí)。經(jīng)光譜測(cè)定法檢測(cè),405 nm處無(wú)對(duì)硝基苯陰離子特征吸收峰。

4.功能活性:在1×Fast-Pace End Repair/dA-Tailing Enzyme中加入1μL本酶和0.5μg包含5和3突出末端的片段化DNA,25°C孵育20分鐘。經(jīng)毛細(xì)管電泳檢測(cè),末端修復(fù)、加dA尾并磷酸化的DNA比率>95%。

Fast-Pace End Repair/dA-Tailing Buffer

1.16小時(shí)孵育檢測(cè):50μL反應(yīng)體系中包含1×Fast-Pace End Repair/dA-Tailing Buffer和1μg HindIII-λDNA,37°C孵育16小時(shí)。經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),條帶無(wú)降解;50μL反應(yīng)體系中包含1×Fast-Pace End Repair/dA-Tailing Buffer和1μg T3 DNA,37°C孵育16小時(shí)。經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),條帶無(wú)降解。

2.核酸內(nèi)切酶活性:50μL反應(yīng)體系中包含1×Fast-Pace End Repair/dA-Tailing Buffer和1μgφX174 RF I DNA,37°C孵育4小時(shí)。經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),RF II轉(zhuǎn)化比<10%。

3.RNase活性:在1×Fast-Pace End Repair/dA-Tailing Buffer中加入40 ng FAM-RNA,37°C孵育16小時(shí)。經(jīng)聚丙烯酰胺凝膠電泳檢測(cè),條帶無(wú)降解。

4.磷酸酶活性:在磷酸酶活性檢測(cè)緩沖液中加入1×Fast-Pace End Repair/dA-Tailing Buffer和2.5 mM對(duì)硝基苯磷酸,37°C下孵育4小時(shí)。經(jīng)光譜測(cè)定法檢測(cè),405 nm處無(wú)對(duì)硝基苯陰離子特征吸收峰。

應(yīng)用[7][8]

快速末端修復(fù)A尾添加模塊可用于NGS測(cè)序?qū)嶒?yàn)中的DNA文庫(kù)構(gòu)建:

對(duì)馬凡綜合征(Marfan syndrome,MFS)患者和晶狀體脫位綜合征(Ectopia lentis syndrome,ELS)患者的原纖維蛋白-1(fibrillin-1,FBN1)基因,轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子受體1(Transforming Growth Factor Beta Receptor TypeⅠ,TGFBR1)和轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子受體2(Transforming Growth Factor Beta Receptor TypeⅡ,TGFBR2)進(jìn)行基因突變篩查,有利于明確相應(yīng)患者的患病原因,并可為家系成員的癥狀前檢測(cè)或下一代的產(chǎn)前篩查提供依據(jù)。

方法1.NGS和MLPA技術(shù)在MFS和ELS基因診斷中的應(yīng)用提取22例MFS患者和1例ELS患者的基因組DNA,用第二代測(cè)序技術(shù)(Next generation sequencing,NGS)對(duì)FBN1、TGFBR1和TGFBR2進(jìn)行突變篩查,然后用Sanger測(cè)序?qū)ν蛔兾稽c(diǎn)進(jìn)行驗(yàn)證,對(duì)NGS未發(fā)現(xiàn)突變的病人,再應(yīng)用多重連接探針擴(kuò)增技術(shù)(Multiplex Ligation-dependent Probe Amplification,MLPA)檢測(cè)FBN1、TGFBR1和TGFBR2是否存在大片段缺失/重復(fù)突變,對(duì)這兩種方法提示有基因組大片段突變的外顯子進(jìn)行PCR和DNA Sanger測(cè)序以證實(shí)突變。

2.一個(gè)FBN1純合突變家系的分析提取該先證者和該家系成員外周血全基因組DNA,用NGS技術(shù)對(duì)先證者FBN1進(jìn)行突變篩查,然后用Sanger測(cè)序?qū)ν蛔兾稽c(diǎn)進(jìn)行驗(yàn)證并對(duì)家系成員進(jìn)行突變位點(diǎn)的Sanger測(cè)序。提取先證者主動(dòng)脈組織的RNA,用RT-PCR擴(kuò)增突變所在外顯子,并進(jìn)行Sanger測(cè)序。結(jié)果1.NGS和MLPA技術(shù)在MFS和ELS基因診斷中的應(yīng)用在22例MFS和1例ELS患者(18號(hào)患者)中發(fā)現(xiàn)20種FBN1突變,其中20種突變中有13個(gè)是錯(cuò)義突變、3個(gè)是無(wú)義突變、2個(gè)剪接位點(diǎn)突變、1個(gè)移碼突變、1個(gè)是大片段缺失突變。

參考文獻(xiàn)

[1]Detection of 15 novel mutations in 52 children from 40 families with the Marfan or Loeys–Dietz syndrome and phenotype–genotype correlations[J].C.Pees,I.Michel‐Behnke,M.Hagl,F.Laccone.Clin Genet.2014(6)

[2]An FBN 1 Deep Intronic Mutation in a Familial Case of M arfan Syndrome:An Explanation for Genetically Unsolved Cases?[J].Elisabeth Gillis,Marlies Kempers,Simone Salemink,Janneke Timmermans,Emile C.Cheriex,Sebastiaan C.A.M.Bekkers,Erik Fransen,Christine E.M.De Die‐Smulders,Bart L.Loeys,Lut Van Laer.Human Mutation.2014(5)

[3]Homozygosity for a FBN1 missense mutation causes a severe Marfan syndrome phenotype[J].J Hogue,C Lee,A Jelin,MN Strecker,VA Cox,AM Slavotinek.Clin Genet.2013(4)

[4]Efficient detection of factor IX mutations by denaturing high-performance liquid chromatography in Taiwanese hemophilia B patients,and the identification of two novel mutations[J].Pei-Chin Lin,Yi-Ning Su,Yu-Mei Liao,Tai-Tsung Chang,Shih-Pien Tsai,Hsiu-Lan Shu,Shyh-Shin Chiou.Kaohsiung Journal of Medical Sciences.2013

[5]The clinical spectrum of missense mutations of the first aspartic acid of cbEGF‐like domains in fibrillin‐1 including a recessive family[J].Hum.Mutat..2010(12)

[6]Low frequency of MLL-partial tandem duplications in paediatric acute myeloid leukaemia using MLPA as a novel DNA screenings technique[J].Brian V.Balgobind,Iris H.I.M.Hollink,Dirk Reinhardt,Elisabeth R.van Wering,Siebold S.N.de Graaf,Andre Baruchel,Jan Stary,H.Berna Beverloo,Georgine E.de Greef,Rob Pieters,C.Michel Zwaan,Marry M.van den Heuvel-Eibrink.European Journal of Cancer.2010(10)

[7]An FBN1 pseudoexon mutation in a patient with Marfan syndrome:confirmation of cryptic mutations leading to disease[J].Dong-chuan Guo,Prateek Gupta,Van Tran-Fadulu,Tera V.Guidry,Magalie S.Leduc,Frederick V.Schaefer,Dianna M.Milewicz.Journal of Human Genetics.2008(11)

[8]盧鑫鑫.基于NGS、MLPA和Sanger測(cè)序的FBN1基因突變研究[D].福建醫(yī)科大學(xué),2016.

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