BeyoFast™ SYBR Green qPCR Mix (2X)

信裕生物的BeyoFast™ SYBR Green qPCR Mix (2X)是一種用于實(shí)時(shí)熒光定量PCR，即qPCR(Quantitative PCR)或real-time PCR的高品質(zhì)預(yù)混液，主要用于cDNA和基因組DNA等的特異性超高靈敏度定量檢測(cè)。
BeyoFast™ SYBR Green qPCR Mix (2X)使用SYBR Green I作為染料。SYBR Green I是一種結(jié)合于雙鏈DNA(double-strand DNA, dsDNA)雙螺旋小溝區(qū)域的綠色熒光染料。SYBR Green I在游離狀態(tài)下的熒光比較微弱，一旦與雙鏈DNA結(jié)合后，其熒光會(huì)大大增強(qiáng)。這樣通過(guò)檢測(cè)熒光強(qiáng)弱就可以定量檢測(cè)PCR過(guò)程中擴(kuò)增產(chǎn)生的雙鏈DNA的數(shù)量。
本產(chǎn)品使用的BeyoFast™ Taq DNA Polymerase是一種與抗體結(jié)合的高品質(zhì)熱啟動(dòng)酶，能夠?qū)崿F(xiàn)便捷高效的熱啟動(dòng)。BeyoFast™ Taq DNA Polymerase中的Taq酶與抗Taq酶的單克隆抗體相互結(jié)合，從而抑制了Taq酶的DNA聚合酶活性，這樣可以有效避免在低溫條件下由引物和模板DNA非特異性退火或引物二聚體引起的非特異性擴(kuò)增。在PCR反應(yīng)的預(yù)變性步驟中抗體會(huì)被加熱失活，這樣可以確保僅在預(yù)變性后才會(huì)把Taq酶的活性釋放出來(lái)，預(yù)變性之前不會(huì)發(fā)生DNA聚合反應(yīng)，從而大大提高了PCR反應(yīng)的特異性、靈敏度和定量檢測(cè)的準(zhǔn)確性。
本產(chǎn)品包含了BeyoFast™ Taq DNA Polymerase、PCR Buffer、dNTPs、SYBR Green I熒光染料、穩(wěn)定劑和鎂離子等所有的通用組分，使操作更簡(jiǎn)單、使用更便捷。用戶只需自備引物、樣品DNA和去離子水即可。
本產(chǎn)品不含ROX，適用于無(wú)需ROX作為校正染料的熒光定量PCR儀。ROX的作用是用于校正與PCR無(wú)關(guān)的熒光波動(dòng)，從而限度減少孔間差異。這種差異可能由多種因素引起，如移液誤差及樣品蒸發(fā)等。不同的熒光定量PCR儀對(duì)ROX的要求不同，請(qǐng)根據(jù)實(shí)際所用儀器選擇含高濃度ROX (High ROX)、低濃度ROX (Low ROX)或不含ROX的BeyoFast™ SYBR Green qPCR Mix (2X)。通常含高濃度ROX的BeyoFast™ SYBR Green qPCR Mix (2X, High ROX)也可以用于不需要ROX或需要低濃度ROX的熒光定量PCR儀。常用儀器所需ROX類型請(qǐng)參考如下表格。

本產(chǎn)品如果用于常規(guī)的96孔板qPCR檢測(cè)(建議反應(yīng)體系為20μl)，每毫升本產(chǎn)品可以進(jìn)行100次檢測(cè)；如果用于常規(guī)的384孔板qPCR檢測(cè)(建議反應(yīng)體系為10μl)，每毫升本產(chǎn)品可以進(jìn)行200次檢測(cè)。
包裝清單：

保存條件：
-20℃避光保存，一年有效； 4℃避光保存，一個(gè)月內(nèi)有效。盡量避免反復(fù)凍融。
注意事項(xiàng)：
使用前需確保整管試劑完全融化，上下顛倒輕輕混勻后使用?；靹蜻^(guò)程中盡量避免產(chǎn)生氣泡。
注意引物退火溫度，當(dāng)退火溫度<60℃時(shí)，推薦使用三步法PCR擴(kuò)增。
本產(chǎn)品中含有SYBR Green I熒光染料，保存本產(chǎn)品或設(shè)置PCR反應(yīng)時(shí)應(yīng)避免強(qiáng)光照射，以盡量避免熒光淬滅問(wèn)題。
對(duì)于超過(guò)350bp或者高GC含量的擴(kuò)增片段，建議增加延伸時(shí)間至60秒或者采用三步法以提高擴(kuò)增效率。
經(jīng)測(cè)試，本產(chǎn)品反復(fù)凍融10次對(duì)使用效果無(wú)顯著影響。但仍需盡量避免反復(fù)凍融本產(chǎn)品，反復(fù)凍融可能使產(chǎn)品性能下降。
qPCR檢測(cè)是超高靈敏度的檢測(cè)，PCR反應(yīng)設(shè)置區(qū)域需盡量避免各種可能的待擴(kuò)增產(chǎn)物的污染。PCR產(chǎn)物宜密封后丟棄，以避免超高濃度的PCR產(chǎn)物污染實(shí)驗(yàn)環(huán)境。
本產(chǎn)品僅限于專業(yè)人員的科學(xué)研究用，不得用于臨床診斷或治療，不得用于食品或藥品，不得存放于普通住宅內(nèi)。
為了您的安全和健康，請(qǐng)穿實(shí)驗(yàn)服并戴一次性手套操作。
 

使用說(shuō)明：
1. PCR反應(yīng)體系的設(shè)置： 
a. 融解并混勻PCR反應(yīng)所需的各種溶液。BeyoFast™ SYBR Green qPCR Mix (2X)完全融解并混勻后置于冰浴上或冰盒內(nèi)。
b. 參考下表在室溫或冰浴上設(shè)置PCR反應(yīng)體系(以96孔板為例)：

注意：(1) 通常引物的終濃度為0.2-0.5μM時(shí)可獲得良好的檢測(cè)效果，也可根據(jù)情況在0.1-1.0μM范圍內(nèi)調(diào)整引物的終濃度。
(2) 通常DNA模板的量以1-10ng cDNA或10-100ng基因組DNA為參考用量。因不同物種的模板中含有的目的基因拷貝數(shù)不同，
如有必要，可對(duì)模板進(jìn)行梯度稀釋，以確定的模板使用量。RT-PCR反應(yīng)得到的cDNA直接作為模板時(shí)，其添加量不要超過(guò)PCR反應(yīng)總體積的10%。
(3) 96孔板的推薦反應(yīng)體系為20μl，也可以根據(jù)實(shí)際實(shí)驗(yàn)需求，按比例擴(kuò)大或縮小反應(yīng)體系。
(4) 建議設(shè)置不加模板的陰性對(duì)照組。
c. 用移液器輕輕吹打混勻或輕微Vortex混勻，室溫離心數(shù)秒，使液體積聚于管底。
d. 將設(shè)置好的PCR反應(yīng)管或PCR反應(yīng)板置于熒光定量PCR儀上，開(kāi)始PCR反應(yīng)。
2. PCR反應(yīng)程序：
在Real-time PCR反應(yīng)前進(jìn)行模板的預(yù)變性，通常設(shè)定為95℃ 2分鐘，復(fù)雜或高GC模板適當(dāng)延長(zhǎng)時(shí)間至5分鐘。本產(chǎn)品中的BeyoFast™ Taq DNA Polymerase可以在15秒內(nèi)可完成至少300bp的擴(kuò)增，可以滿足絕大多數(shù)的qPCR實(shí)驗(yàn)；對(duì)于超過(guò)350bp或者高GC含量的擴(kuò)增子，建議增加延伸時(shí)間至60秒或者采用三步法以提高擴(kuò)增效率。建議采用如下的PCR程序，本程序是以ABI 7900HT熒光定量PCR儀為例：
a. 預(yù)變性：95℃ 2min
b. 變性：95℃ 15sec
c. 退火/延伸：60℃ 15-30sec
d. 重復(fù)步驟b和步驟c，總共40個(gè)循環(huán)
e. 熔解曲線分析(可選)：95℃ 15sec, 60℃ 15sec, 95℃ 15sec
f. 使用熒光定量PCR儀提供的軟件分析結(jié)果
三步法只需在退火/延伸后加一步72℃ 30sec，隨后重復(fù)步驟b、c及增加的這一步驟共40個(gè)循環(huán)即可。
注：以上舉例為常規(guī)qPCR反應(yīng)系統(tǒng)，僅供參考。實(shí)際反應(yīng)條件因模板、引物等的結(jié)構(gòu)不同而各異，需根據(jù)模板、引物、目的片段的特點(diǎn)設(shè)定反應(yīng)條件，并根據(jù)比例放大或縮小反應(yīng)體系。

常見(jiàn)問(wèn)題：
1. 熒光定量PCR結(jié)果不理想，出現(xiàn)特異性不好或擴(kuò)增效率不高時(shí)，可能是由于以下原因造成：
a. 引物設(shè)計(jì)不佳。請(qǐng)選擇適當(dāng)?shù)囊镌O(shè)計(jì)軟件進(jìn)行引物設(shè)計(jì)，注意引物的GC含量、二級(jí)結(jié)構(gòu)、二聚體、退火溫度、長(zhǎng)度、特異性等方面的問(wèn)題。也可以嘗試使用有文獻(xiàn)報(bào)道使用過(guò)的引物，或者從信裕生物訂購(gòu)經(jīng)過(guò)測(cè)試的qPCR引物。
b. 待擴(kuò)增片段GC含量偏高。GC含量較高的情況下PCR會(huì)變得相對(duì)比較困難，此時(shí)宜更換引物。
c. PCR反應(yīng)體系在室溫設(shè)置時(shí)容易導(dǎo)致非特異性條帶，但在使用熱啟動(dòng)酶時(shí)可以有效避免室溫操作導(dǎo)致的非特異性條帶的產(chǎn)生。
但對(duì)于一些較難擴(kuò)增的產(chǎn)物，可以嘗試在冰浴上設(shè)置PCR反應(yīng)體系，以進(jìn)一步減少非特異性的DNA擴(kuò)增。
d. 退火溫度不佳，需要優(yōu)化。這種情況下宜更換引物。
e. 待擴(kuò)增片段GC含量較高或長(zhǎng)度較長(zhǎng)，變性不夠充分。此時(shí)宜更換引物，使待擴(kuò)增片段的GC含量和長(zhǎng)度適中。
f.  模板量太低，此時(shí)宜適當(dāng)加大模板量。
g. 模板中含有抑制PCR反應(yīng)的物質(zhì)，可以用適當(dāng)?shù)腄NA純化方法例如柱純化等純化模板DNA。
2. 反應(yīng)條件優(yōu)化方法：
a. 引物濃度：通常引物終濃度為0.2-0.5μM時(shí)可獲得良好檢測(cè)效果，終濃度可以在0.1-1.0μM范圍內(nèi)適當(dāng)調(diào)整。如果希望提高反
應(yīng)特異性，可降低引物濃度；如果希望提高擴(kuò)增效率，可增加引物的濃度，從而優(yōu)化反應(yīng)體系。
b. 退火溫度：建議采用兩步法PCR，退火溫度60℃進(jìn)行反應(yīng)。如果希望提高反應(yīng)特異性，可提高退火溫度，以60-64℃作為退火
溫度的調(diào)整范圍。在引物Tm值較低而得不到良好的實(shí)驗(yàn)結(jié)果時(shí)，可嘗試進(jìn)行三步法PCR擴(kuò)增，三步法的退火溫度請(qǐng)以56-64℃作為溫度設(shè)置的參考范圍。
c. 延伸時(shí)間：建議采用兩步法PCR，延伸15-30秒。對(duì)于超過(guò)350bp或者高GC含量的擴(kuò)增子，建議增加延伸時(shí)間至60秒或者采用
三步法以提高擴(kuò)增效率。