鵪鶉源性成分PCR檢測試劑盒
特別提示:包括鵪鶉源性成分PCR試劑盒在內,本公司的所有產品僅可用于科研實驗,嚴禁用于臨床醫(yī)療及其他非科研用途! 產品名稱:鵪鶉源性成分PCR檢測試劑盒 英文名稱: 產品規(guī)格:50次 產品保存:-20℃保存 產品有效期:一年 儲存條件:-20℃避光保存,避免反復凍融。 運輸:低溫、避光,快遞免費送貨上門。
產品名稱
方法
規(guī)格
價格
鵪鶉源性成分LAMP試劑盒
LAMP
50次
2490元
PCR
1490元
鵪鶉源性成分染料法熒光定量PCR試劑盒
染料法
鵪鶉源性成分探針法熒光定量PCR試劑盒
探針法
3490元
鵪鶉源性成分PCR試劑盒產品及特點: 因此快速靈敏檢測鵪鶉源性成分具有重要意義。本產品就是為此目的根據 PCR 原理開發(fā)的試劑盒,它具有下列特點: 1. 即開即用,用戶只需要提供 DNA 模板。 2. 引物經過精心優(yōu)化,專一性強,只擴增鵪鶉源性成分,與其他植物沒有交叉反應。 3. 提供陽性對照,便于區(qū)分假陰性樣品。 4. PCR mix 中含上樣染料,PCR 后可以直接上樣電泳。 5. 本試劑盒足夠做 40μL 體系的 PCR 50 次,但只能用于科研。 鵪鶉源性成分PCR試劑盒規(guī)格及成分:
成分
編號
十孔盒包裝
PCR MagicMix 3.0
1
1 mL(紅蓋)
超純水
2
1 mL(亮黃色)
鵪鶉源性成分 PCR 引物混合液
3
100 μL(白蓋)
鵪鶉源性成分 PCR 陽性對照(1×10E8 拷貝/μL)
4
50 μL(黃蓋)
核酸釋放劑(試用裝)
5
20 次(1 mL,綠蓋)
使用手冊
6
1 份
運輸及保存:低溫運輸,-20℃保存,保存期限為一年。陽性對照需要單獨放置,不要污染其他試劑。 自備試劑:樣品 DNA。 鵪鶉源性成分PCR試劑盒使用方法: 一、樣品 DNA 的制備 1. 用自選方法純化 N+2 個樣品的 DNA,本試劑盒跟市場上大多數(shù)核酸提取試劑盒兼容。本試劑盒免費贈送20 次核酸釋放劑試用裝,其使用手冊可以從本公司網站訂購核酸釋放劑。 2. 如果有 N 個樣品,則需要做 N+2 個提取,包括一個樣品制備陽性對照和一個樣品制備陰性對照。樣品制備陽性對照是在適量水(取決于試劑盒要求的樣品起始量)中加 10μL 鵪鶉源性成分 PCR 陽性對照的 1000 倍稀釋液而得,樣品制備陰性對照是直接用水。提取結束后最后得到模板 DNA 放冰上待用。 二、設置 PCR 反應(40μL 體系) 3. 對 N+2 個樣品,在 PCR 時需要增加一個 PCR 陽性對照和一個 PCR 陰性對照,故需要設置 N+4 個反應。在 N+4 個 PCR 管中分別加入下列成分:
N+2 個樣品管
PCR 陰性對照
PCR 陽性對照
各 20 μL
20 μL
鵪鶉源性成分PCR引物混合液
各 2 μL
2 μL
N+2 個樣品 DNA 模板
各 18 μL
--
PCR 陰性對照(水)
18 μL
PCR 陽性對照(鵪鶉源性成分PCR 陽性對照的 1000倍稀釋液)
4. 按下表設置 PCR 反應:
過程
溫度
時間
預變性
95℃
5 min
PCR 反應(35 個循環(huán))
15 sec
57℃
72℃
40 sec
最后延伸
10 min
三、電泳檢測 5. 取 10-20 μL PCR 產物。電泳檢測 PCR 產物。本產品提供的 PCR Mix在擴增結束后可以直接上樣,不需要另外再加 loading buffer。PCR 產物陽性對照必須有預期條帶出現(xiàn),陰性對照必須無任何擴增,否則實驗無效。對沒有擴增產物的樣品,可以稀釋 10 倍后重復 PCR 擴增以排除 PCR 抑制劑的感染。 PCR常見問題的常見原因 1. cDNA產量的很低可能的原因: 1) RNA模板質量低 2)對mRNA濃度估計過高 3) 反應體系中存在反轉錄酶抑制劑或反轉錄酶量不足 4) 同位素磷32過期 5) 反應體積過大,不應超過50μl 2. 擴增產物在電泳分析時沒有條帶或條帶很淺 1) 最常見的原因在于您的反應體系是PCR的反應體系而不是RT-PCR的反應體系 2)與反應起始時RNA的總量及純度有關 3)建議在試驗中加入對照RNA 4)鏈的反應產物在進行PCR擴增時,在總的反應體系中的含量不要超過1/10 5)建議用Oligo(dT)或隨機引物代替基因特異性引物(GSP)用于鏈合成。由于RNA模板存在二級結構,如環(huán)狀結果,有可能導致GSP無法與模板退火;或SSⅡ反轉錄酶無法從此引物進行有效延伸。 6)目的mRNA中含有強的轉錄中止位點,可以試用以下方法解決: a. 將鏈的反應溫度提高至50℃。 b. 使用隨機六聚體代替Oligo(dT)進行鏈反應。
3. 產生非特異性條帶 1) 用RT陰性對照檢測是否被基因組DNA污染。如果RT陰性對照的PCR結果也顯示同樣條帶,則需要用DNase I重新處理樣品。 2) 在PCR反應中,非特異的起始擴增將導致產生非特異性結果。在低于引物Tm 2至5℃的溫度下進行退火,降低鎂離子或是目的DNA的量將減少非特異性結果的產生。 3) 由于mRNA剪切方式的不同,根據選擇引物的不同將導致產生不同的RT-PCR結果。 4. 產生彌散(smear)條帶 1) 在PCR反應體系中鏈產物的含量過高 2) 減少引物的用量 3) 優(yōu)化PCR反應條件/減少PCR的循環(huán)次數(shù) 4) 在用DNase處理被DNA污染的RNA樣品時,其產生的寡核苷酸片段會產生非特異性擴增,一般會顯示為彌散背景。 5. 產生大分子量的彌散條帶 1) 大多數(shù)情況下是由于退火溫度過低而導致的非特異性的起始及延伸產生的 2) 對于長片段的PCR,建議將反應體系中cDNA的濃度稀釋至1:10(或1:100-1:200) 6. 在無反轉錄酶的情況下,對照RNA獲得擴增結果
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